Большая электронная библиотека законов
Загрузить Adobe Flash Player

  Главная

  Законодательство РБ

  Кодексы Беларуси

  Законодательные и нормативные акты по дате принятия

  Законодательные и нормативные акты принятые различными органами власти

  Законодательные и нормативные акты по темам

  Законодательные и нормативные акты по виду документы

  Международное право в Беларуси

  Законодательство СССР

  Законы других стран

  Кодексы

  Законодательство РФ

  Право Украины

  Полезные ресурсы

  Контакты

  Новости сайта

  Поиск документа


Полезные ресурсы

- Таможенный кодекс таможенного союза

- Каталог предприятий и организаций СНГ

- Законодательство Республики Беларусь по темам

- Законодательство Республики Беларусь по дате принятия

- Законодательство Республики Беларусь по органу принятия

- Законы Республики Беларусь

- Новости законодательства Беларуси

- Тюрьмы Беларуси

- Законодательство России

- Деловая Украина

- Автомобильный портал

- The legislation of the Great Britain


Правовые новости





Приказ Министерства здравоохранения Республики Беларусь от 24 июня 1997 г. №154 "О дальнейшем совершенствовании системы контроля качества клинических лабораторных исследований"

Архив февраль 2009 года

Право Беларуси 2011

<< Содержание | <<< Главная страница

Стр. 8

| Стр.1 | Стр.2 | Стр.3 | Стр.4 | Стр.5 | Стр.6 | Стр.7 | Стр.8 | Стр.9 | Стр.10 | Стр.11 | Стр.12 | Стр.13 | Стр.14 | Стр.15 | Стр.16 |


неудовлетворительно.  Толстые участки  содержат  больше  лимфоцитов,
тонкие   -   больше   моноцитов   и   сегментоядерных   клеток.  Для
доброкачественного исследования морфологии клеток  большое  значение
имеет правильная его фиксация и окраска.

                          Источники ошибок

     Правильная фиксация мазка придает стойкость форменным элементам
крови  по  отношению  к  содержащейся  в  красках  воде, которая без
фиксации   мазка    гемолизирует  эритроциты  и  изменяет   строение
лейкоцитов.  Фиксация  мазка, вызывая  коагуляцию белка, прикрепляет
препарат  к  стеклу.  В  качестве  фиксаторов  предложены: метиловый
спирт,  этиловый спирт, смесь Никифорова, состоящая из равных частей
этилового  спирта  и  серного  эфира.  Лучшим  фиксатором   является
метиловый  спирт.  Недостаточная  фиксация мазка дает слабую окраску
нейтрофильной  зернистости  лейкоцитов  и  ведет  к   некачественной
окраске клеток.
     Качественная окраска мазка позволяет правильно дифференцировать
клетки крови и их структуру при микроскопическом  исследовании.  При
применении  любой  методики  окрашивания  мазка  крови  важно  точно
соблюдать методические правила приготовления растворов  и  временные
промежутки   в   течение  процесса  окрашивания.  При  приготовлении
растворов необходимо учитывать рН воды; она должна быть нейтральной.
Партии   красителя,   существующие   в   продаже,   имеют  различную
интенсивность  окраски.  Это  обязывает  опытным  путем   установить
оптимальную   концентрацию  (разведение)  и  время  окрашивания  для
каждого флакона красителя, которые устанавливаются путем окрашивания
серии  препаратов  растворами  с  различной концентрацией красителя,
меняя длительность его воздействия.
     Для  контроля  качества подсчета лейкоцитарной формулы в мазках
крови  используют контрольные мазки. Их готовят из капиллярной крови
доноров  и  больных  на  предметных  стеклах,  выполняя требования к
правильному  приготовлению  мазков,  фиксации  и  окрашиванию. Затем
контрольные  мазки  многократно просчитываются  (не менее 20 раз) по
200    клеток  (не  менее  5  квалифицированных  специалистов).   Из
полученных  данных  статистически  рассчитывают критерии определения
                                              _
правильности  подсчета  мазка  путем  расчета Х  и +-2S. Контрольные
образцы,  нормальные  и  патологические,  регулярно вводятся в поток
клинических  образцов  и  с  их  помощью  проверяют  качество работы
каждого  сотрудника  лаборатории. Подсчет считается правильным, если
результаты подсчета клеток входят в рассчитанные контрольные границы
_
Х +-2S для каждого вида клеток крови.

               Суспензия   фиксированных  эритроцитов

     Фиксация эритроцитов  приводит к физико-химическим изменениям в
мембране эритроцитов,  что предохраняет клетки от лизиса. В качестве
фиксирующего     материала     предложены    формальдегид,    танин,
глутаральдегид, ледяная уксусная кислота. Наибольшее распространение
получила   методика  фиксации  эритроцитов  глутаральдегидом.  После
фиксации размер клеток изменяется в течение первых 3-4  дней,  затем
остается стабильным от нескольких месяцев до нескольких лет.

                       Методика приготовления

     Кровь собирают в сосуд с антикоагулянтом ЭДТА (5 мг сухого ЭДТА
на 1  мл  крови).  Затем  плазму  трижды  промывают  изоосмотическим
фосфатным  буфером.  Для  этого  к собранной крови добавляют раствор
буфера  в  2  раза  больше  объема  крови  и  полученную   суспензию
центрифугируют   в  течение  10  минут  при  3000  об/мин.  Промытые
эритроциты фиксируют 0,25%  раствором  глутаральдегида  в  фосфатном
буфере,  который постепенно добавляют к эритроцитам в отношении 1:10
(кровь:фиксирующий раствор).  Фиксация  производится  при  комнатной
температуре   в   течение   часа.  Фиксированные  эритроциты  трижды
промывают дистиллированной водой и доводят до окончательного  объема
водой или 12,5%  раствором глицина. Затем добавляют 3 мл 1% раствора
азида натрия.  Тщательно перемешивают на магнитной мешалке в течение
30  минут  и  разливают  в стерильные стеклянные пузырьки по 2-5 мл.
Хранение  проводят  при  Т  4°С.   Перед   использованием   материал
перемешивают на магнитной мешалке в течение 10 минут.  Срок хранения
- от 6 месяцев до 1 года.
     Суспензию используют для контроля качества подсчета эритроцитов
автоматическим  и  камерным методами.

          Приготовление изоосмотического фосфатного буфера

     154 ммоль/л,  рН7,4:  0,246 г  однозамещенного  фосфорнокислого
калия  и  3,187  г  двузамещенного фосфорнокислого калия трехводного
растворяют дистиллированной водой в мерной колбе на 100 мл.

           Ограничения применения консервированной крови
                    и фиксированных клеток крови

     1. Дефицитность крови.
     2. Фиксированные  эритроциты  обладают  большей  вязкостью   по
сравнению  с  кровью (прилипают к стенкам и не переходят в состояние
суспензии).
     3. Фиксирование  клеток  изменяет  их  электрический заряд, что
влияет  на  правильность  результатов  при  автоматическом  подсчете
клеток.
     4. Фиксированные  клетки  более  ригидны,  что  затрудняет   их
прохождение через отверстия анализатора и меняет амплитуду пульсовой
волны (при автоматическом подсчете).
     5. В первые 3-5 дней происходит уменьшение объема фиксированных
эритроцитов,  затем их размеры  остаются  стабильными  в  течение  6
месяцев.
     6. Дефицитность  реактивов  (глутаральдегида и азида натрия).

       Возможные ошибки при подсчете количества клеток крови

     1. При взятии крови:
     а)  неправильный  забор крови (выдавливание из пальца, сгустки,
гемолиз);
     б) использование неточно откалиброванных пипеток;
     в) неточное пипетирование и разведение крови;
     г)  недостаточно  быстрый  забор  крови  и  размешивание  ее  с
реактивом для разведения.
     2. При разведении:
     а) неточное пипетирование реактива для разведения;
     б) использование грязной посуды и пипеток;
     в) использование неточно откалиброванных пипеток;
     г)  использование  некачественного  реактива  для   разведения,
вызывающего гемолиз эритроцитов.
     3. При измерении:
     а) несоблюдение правил подготовки счетной камеры;
     б)  несоблюдение  временных промежутков при подсчете количества
эритроцитов в камере, необходимых для оседания клеток на сетку;
     в) нетщательное перемешивание крови перед заполнением камеры;
     г)  подсчет  клеток  в  недостаточном  количестве  квадратов  и
несоблюдение правил подсчета;
     д)  использование неоткалиброванного прибора при автоматическом
подсчете клеток.

    Метод сохранения мазков для многократного микроскопирования

     К 0,5 мл клея БФ-6 прибавляют 3 мл  абсолютного  спирта,  3  мл
бутилового  спирта  и тщательно перемешивают до получения прозрачной
жидкости с желтоватым оттенком.  Хранят в склянке с хорошо притертой
пробкой.  На  предметное  стекло  с  мазком наносят пипеткой большую
каплю пленкообразующей смеси и, покачивая стекло, дают ей равномерно
растечься по его поверхности.  Избыток смеси с края стекла удаляют и
препарат кладут на горизонтальную  поверхность для высушивания.  При
комнатной  температуре  пленка  высыхает 15-20 минут.  Для ускорения
сушки мазок можно поместить в термостат при 60°С.

               X. КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ИССЛЕДОВАНИЙ МОЧИ

     Почки выделяют  ценный  материал  для  исследования   -   мочу,
микроскопический и химический анализ которой многое может рассказать
о  состоянии  организма.  Исследование  мочи  принадлежит  к   числу
анализов,  к  которым  чаше  всего прибегает практический врач.  Это
понятно,  ибо правильная диагностическая оценка данных  исследования
мочи  помогает  разобраться  не  только  в  почечной патологии,  где
правильный диагноз часто совершенно невозможен без анализа мочи,  но
также  ориентирует его при ряде других заболеваний.  Отсюда понятно,
что анализ мочи должен быть произведен у каждого больного.
     Степень  точности  получаемых  результатов исследований мочи, в
основном,    зависит    от  квалификации  лаборанта,   используемого
оборудования, реактивов и методов исследования.
     Для получения   правильных   и   воспроизводимых    результатов
исследования  мочи  используют  контрольные  материалы,  близкие  по
возможности к образцам  мочи  пациентов,  и  контрольные  мазки  для
контроля   качества   микроскопических   исследований  осадка  мочи.
Концентрация исследуемых  веществ  в  контрольном  материале  должна
соответствовать  практической  чувствительности используемого метода
исследования.
     Контрольные материалы  с  высокими концентрациями веществ могут
давать положительные реакции  даже  с  испорченными  реактивами  или
полосками  с  экспресс-тестами, а  одной  из  важных  задач контроля
исследования мочи как раз и является выявление  даже  незначительной
потери   в   чувствительности   исследуемого  метода  (особенно  при
качественных пробах). В качестве контрольных материалов для контроля
химического состава мочи используют:
     1. Водные растворы веществ.
     2. Сливную мочу с консервантами.
     3. Искусственные растворы мочи с добавками веществ, исследуемых
в моче.

            Способы приготовления контрольных материалов

     Контрольные  препараты  для  микроскопии  осадков  мочи  должны
содержать  встречающиеся  в  моче  соли,  полиморфные  эпителиальные
клетки,    различные    виды    цилиндров,  лейкоциты,   эритроциты,
болезнетворные    и   неболезнетворные  бактерии,  грибы,   паразиты
животных. Кроме того, целесообразно иметь препараты с осадками мочи,
характерными для наиболее распространенных заболеваний.
     Кроме  использования  контрольных  материалов  применяют  метод
параллельных проб, смешанных и повторных проб (см.выше).
     Водные  растворы  веществ  с известным содержанием используются
для  контроля  качества  исследований  (определения или обнаружения)
химического  состава  мочи  (например,  раствор  глюкозы,  мочевины,
альбумина).

                     Приготовление слитой мочи

     Слитая моча используется в качестве контрольного материала  для
контроля качества исследований химического состава мочи.
     1.1. Реактивы.
     1. Слитая человеческая моча, 1 л.
     2. ЭДТА, хч, 2,0 г.
     3. Изопропиловый спирт, хч, 1 л.
     4. Раствор  тимола,  5  мл  (100  г  тимола  растворяют  в  1 л
изопропилового спирта).
     Используются обычно  применяемые  в  лаборатории   методы   для
качественного  и  количественного  исследования  химического состава
мочи.
     1.2. Способ приготовления.
     К 1   л   свежей    человеческой    мочи    добавляют    2    г
этилендиаминтетраацетата натрия (ЭДТА) и при энергичном встряхивании
и перемешивании флакона приливают 5  мл  раствора  тимола.  Через  2
недели  мочу  центрифугируют  для  удаления  слизи и незначительного
количества мочевой кислоты.  После такой обработки  моча  становится
прозрачной и почти не имеет запаха.  Контрольный материал хранят при
комнатной температуре. Срок годности - несколько лет.
     1.3. Приготовление контрольных растворов, имитирующих мочу.
     Контрольный раствор № 1.
     Применяется  в  качестве  контрольного  материала  для контроля
качества  исследований химического состава мочи.
     1. Натрий хлористый ч, чда, хч.
     2. D(+) - Глюкоза, безводная, ч, чда.
     3. Мочевина ч, чда.
     4. Ацетон ч, чда.
     5. Цельная кровь с величиной гематокрита 0,40-0,45 л/л.
     6. Белок  сыворотки  крови.  Используют  сыворотку  пациента  с
исследованным содержанием общего белка или контрольную сыворотку.
     7. Хлороформ   высокой   степени   очистки.  Используют  методы
качественного исследования химического состава мочи.

                        Способ приготовления

     В  круглодонную  колбу  вместимостью 2 л вносят 10 г хлористого
натрия, 10 г мочевины, 1 г глюкозы и 4 мл ацетона (табл.14).

                                                          Таблица 14

 Перечень добавляемых веществ и их концентрация в конечном растворе

--------------------T-----------------T-----------------------------
                    ¦  Добавляемое    ¦   Концентрация вещества в
     Вещество       ¦   количество    ¦     контрольном растворе
                    ¦    вещества     ¦
--------------------+-----------------+-----------------------------

NаСl                      10,0 г                   -

Мочевина                  10,0 г               83 ммоль/л

Глюкоза                    1,0 г             2,775 ммоль/л

| Стр.1 | Стр.2 | Стр.3 | Стр.4 | Стр.5 | Стр.6 | Стр.7 | Стр.8 | Стр.9 | Стр.10 | Стр.11 | Стр.12 | Стр.13 | Стр.14 | Стр.15 | Стр.16 |




<< Навигация | <<< Главная страница

карта новых документов

Разное

При полном или частичном использовании материалов сайта ссылка на pravo.levonevsky.org обязательна

© 2006-2017г. www.levonevsky.org

TopList

Законодательство Беларуси и других стран

Законодательство России кодексы, законы, указы (изьранное), постановления, архив


Законодательство Республики Беларусь по дате принятия:

2013 2012 2011 2010 2009 2008 2007 2006 2005 2004 2003 2002 2001 2000 до 2000 года

Защита прав потребителя
ЗОНА - специальный проект

Бюллетень "ПРЕДПРИНИМАТЕЛЬ" - о предпринимателях.



Новые документы




NewsBY.org. News of Belarus

UK Laws - Legal Portal

Legal portal of Belarus

Russian Business

The real estate of Russia

Valery Levaneuski. Personal website of the Belarus politician, the former political prisoner